Biologický mikroskop na objem tkáňového bloku
Biologický mikroskop s kondenzorem může pohybovat kondenzorem nahoru a dolů, aby byla jeho jasnost mírná, a také může měnit aperturu proměnného analyzátoru světla tak, aby bylo dosaženo střední jasnosti 9b. Pokud je světlo na slunci, lze kondenzor přiměřeně zvednout a aperturu proměnného optického šumu vhodně zvětšit. Pokud je světlo příliš silné, lze kondenzor přiměřeně snížit a přiměřeně zmenšit clonu křižovatky. Pokud se i v tomto případě cítíte oslnění, můžete si vybrat vhodný filtr a umístit jej na držák pod kondenzátor. Tento tussah může získat jas, který vás uspokojí. Pro změnu velikosti apertury optického čtení a výběr vhodných filtrů je samozřejmě nutné po určité době praxe získat zkušenosti s nastavováním horní a dolní polohy kondenzoru.
Velmi důležitým problémem biomikroskopu je, že s obsahem 65 prvků v každé části po lyofilizaci a zalití pryskyřicí (FD) a lyofilizaci je třeba zacházet opatrně, aby nedošlo k poškození buněk, které mají být pozorovány a analyzovány. Protože rentgenová mikroanalýza nejenže zahrnuje mnoho kroků, ale také hodně stojí, je velmi politováníhodné vyvodit nesprávný závěr, pokud jsou analyzované buňky poškozené nebo mrtvé buňky po dlouhodobé a vícestupňové léčbě. Například buňky myokardu oddělené působením kolagenázy mají dvě formy, jedna je dlouhá tyčinka a druhá je kulatá. Posledně jmenovaná je umírající buňka, která je poškozena během buněčné separace.
Obsah a distribuce elektrolytů v těchto dvou typech článků se pod biologickým mikroskopem velmi liší. Na je velmi vysoká a K je velmi nízká v kulatých buňkách myokardu a koncentrace ca v lineárních dendritech je velmi vysoká. Ve srovnání s jinými analytickými metodami bylo prokázáno, že vysoké Na a nízké K v kruhových buňkách a vysoké ca v mitochondriích jsou výsledkem poškození buněčné membrány během buněčné separace. Metoda fixace buněk a tkání za studena často spočívá v jejich fixaci nejprve zchlazením a poté jejich uložením do kapalného dusíku. Pro konzervační efekt je velmi důležitá zhášecí fixace. Živé buňky nebo čerstvé tkáně jsou bohaté na vodu. Při kalení se často stává, že části buněk nebo tkání, které jsou v přímém kontaktu s kryoprotektivy (zejména při kalení kapalným dusíkem), jsou nejprve zmrazeny a fixovány, čímž se vytvoří „skořápka“, která brání zmrazení a fixaci centrálního část buněk. Proto se při provádění rentgenové mikroanalýzy často zjistí, že ve středu větších buněk jsou ledové krystaly. Aby se tomu zabránilo, používá se jako chladivo látka s bodem tání vyšším než má kapalný dusík, ale teplotou sušení nižší než 806c. Existuje mnoho takových látek, ale nejsnáze dostupný je koncentrovaný propan (bod varu-42．120c, bod tání-187．10c, molekulová hmotnost-44.1), který má nejrychlejší rychlost chlazení. Jeho nevýhodou je ale hořlavost.
Biologický mikroskop umí nasadit svalové vlákno na speciální rám, a když se svalové vlákno stáhne do určité fáze a je třeba jej zafixovat, tryska se okamžitě spustí, takže kapalný propan je nastříkán na svalové vlákno, aby se uhasilo a fixovalo to. Poté se svalová vlákna vyjmou spolu se stojanem a vloží do tekutého dusíku. Pokud jsou krvinky nebo separované buňky fixovány, nejprve centrifugujte při nízké rychlosti, aby se buňky zkoncentrovaly, přeneste buňky do stříbrné malé zkumavky s dobrou tepelnou vodivostí a vložte malou zkumavku do kapalného propanu pro zmrazení a fixaci. Při fixaci krysího pankreatu v Hallově laboratoři byly dva ocelové bloky předchlazeny kapalným heliem (nebo tekutým dusíkem) a dva měděné bloky byly umístěny před a za slinivku kleštěmi, takže tety byly uhaseny a fixovány. Tkáň nebo buňky mohou být skladovány po dlouhou dobu poté, co byly zchlazeny a fixovány a přeneseny do kapalného dusíku.
