Biologická mikroskopie prováděná na objemu tkáňových bloků
Biologické mikroskopy Mikroskopy s kondenzorem mohou pohybovat kondenzorem nahoru a dolů tak, aby jeho jasnost byla mírná, a také mohou měnit aperturu proměnlivého zpracování světla za účelem dosažení střední jasnosti 9b. Pokud je světlo slunečné, lze kondenzor posunout nahoru a aperturu proměnného světla lze zvětšit. Je-li světlo příliš silné, pak zrcadlo reflektoru může být vhodné dolů, clona proměnného světla skok pro vhodné zmenšení. Pokud se v tomto případě stále cítíte oslepující, můžete zvolit vhodný filtr umístěný v držáku pod reflektorem. To lze získat, abyste byli spokojeni s jasem. Samozřejmě v nastavení horní a dolní polohy kondenzorové čočky lze měnit velikost clony odečítání světla a výběr vhodných filtrů, tedy po určité době praxe a zkušeností.
Biologický mikroskop Velmi důležitým problémem je proces odběru vzorků a separace buněk, lyofilizace a zalévání pryskyřicí (FD) po zmrazení ultrabookletů, lyofilizace po jemném zpracování každé části obsahu 65 elementárního složení musí být manipulovat velmi opatrně a nesmí poškodit buňky, které mají být pozorovány a analyzovány. Vzhledem k tomu, že rentgenová mikrooblastní analýza nepředstavuje pouze mnoho kroků a náklady jsou velmi vysoké, pokud po dlouhé době a několika krocích zpracování jsou analyzovanými buňkami poškozené buňky nebo mrtvé buňky, lze vyvodit nesprávné závěry je velmi politováníhodné. Například kardiomyocyty izolované působením kolagenázy mají dvě morfologie, jedna má tvar dlouhé tyčinky a druhá je kulatá. Posledně jmenované jsou umírající buňky, které byly poškozeny během procesu buněčné izolace.
Biologický mikroskop Myovlákno lze umístit na speciální stojan tak, aby kontrakce tohoto myovlákna dosáhla určité časové fáze, kdy je potřeba jej zafixovat, a poté ihned aktivovat trysku, aby se kapalný propan rozprášil na myovlákno, takže je ochlazena a fixována za studena. Poté se svalové vlákno vyjme spolu se stojanem a vloží do tekutého dusíku. Pokud fixujeme krvinky nebo izolované buňky, nejprve nízkorychlostní centrifugaci, aby se buňky zkoncentrovaly, buňky se přenesou do dobré tepelné vodivosti stříbrné zkumavky, zkumavky do kapalného propanového korpusu za studena fixujeme. Hallova laboratoř fixovaná krysí slinivka, první dva kusy oceli s předchlazením kapalným heliem (nebo kapalným dusíkem), se svorkou upnutou dva kusy mědi budou umístěny před a za slinivku, takže teta žláza zhášení za studena fixace. Tkáně nebo buňky mohou být po zchlazení a fixaci dlouho skladovány jejich převedením do kapalného dusíku.
Biomikroskopie Kromě aktuálně *propagované* metody zmrazených ultratenkých řezů je zde popsána další technika depozice, kterou vědci používají. Látka se přidá před analýzou tak, aby vytvořila usazeninu s analyzovanou složkou, aby ji imobilizovala, a usazenina se pak analyzuje. Například oxalát a pyroantimonát se běžně používají k ukládání Ca v myocytech; první z nich není dostatečně citlivý na nízké koncentrace ca v cytoplazmě; pyroantimonát má vyšší citlivost a tvoří v plazmě elektronicky hustá ložiska s volným ca, ale pyroantimonát tvoří také ložiska se sodíkem, manganem, baryem a železem, které mají horší specificitu. Proces přípravy vzorku byl podobný jako u běžných vzorků ultratenkých řezů z transmisní elektronové mikroskopie s tím rozdílem, že 3% pyroantimonát draselný (fosfátový pufr, pH 7,6) byl fixován po dobu 6 hodin před fixací a na obarvených ultratenkých řezech svalu, černá sraženina byla pozorována ve střední čáře A a 2 pruhů každého řezu myonektomie a pak byly neobarvené řezy použity pro rentgenovou mikrooblastní analýzu. Diaminobenzidin tetrahydrochlorid (DAB) se mimo jiné používá k vysrážení materiálu obsahujícího hemoglobin. Tento typ precipitační reakce histochemie a rentgenového mikroplošného můstku lze považovat za použití v laboratořích, které nemají stav zmrazených ultratenkých řezů. Výšky píku prvků, které mají být analyzovány, lze použít pro semikvantitativní analýzu.
